ELISA试剂盒检测结果,吸光度值过高或过低可能是什么原因导致的?
ELISA试剂盒检测中吸光度(A值)过高或过低,主要与样本状态、试剂质量、操作流程、仪器及环境条件这四类因素相关,具体原因如下:
一、吸光度值过高的原因
1、样本因素
目标抗原/抗体浓度远超试剂盒的线性检测范围,比如未按说明书要求对高浓度样本进行稀释,或样本本身处于高表达状态(如疾病急性期的血清样本);样本中存在非特异性交叉反应物质,比如同源蛋白、异嗜性抗体,会与试剂盒的捕获/检测抗体发生非特异性结合,叠加信号导致吸光度升高;样本处理不当,如溶血、脂血样本,其中的血红蛋白、脂质会产生背景干扰,造成吸光度假性增高。
2、试剂因素
抗体或酶标记物浓度偏高,导致抗原-抗体结合反应过度,酶促反应信号被放大;试剂盒保存不当,如抗体发生聚集、酶标记物失活不完全,会引发非特异性结合;底物溶液变质或浓度过高,会加速酶促显色反应,使吸光度超出检测上限。
3、操作因素
孵育时间过长或孵育温度高于说明书要求,会促进抗原-抗体结合及酶促反应,增强显色信号;洗板不充分,孔内残留的酶标记物未被彻底洗净,会持续催化底物显色;加样时出现孔间交叉污染,比如移液器吸头未更换,导致高浓度样本的成分进入其他孔位。
4、仪器与环境因素
酶标仪波长设置偏差,未使用试剂盒指定的检测波长(如450nm),可能误读信号;检测环境光照过强,底物在光照下发生非酶促显色,导致吸光度升高。

二、吸光度值过低的原因
1、样本因素
目标抗原/抗体浓度低于试剂盒的最低检测限,比如样本本身含量极低,或稀释倍数过高;样本保存不当,如反复冻融导致抗原/抗体降解失活;样本中存在抑制剂,比如某些抗凝剂、防腐剂,会抑制抗原-抗体结合或酶的活性。
2、试剂因素
试剂盒过期或保存条件不符合要求(如温度过高、受潮),导致抗体活性下降、酶标记物失活;试剂添加量不足,比如抗体、酶标二抗或底物溶液加样量少于规定体积;底物溶液失效,如底物氧化变质,无法被酶催化显色。
3、操作因素
孵育时间过短或孵育温度低于要求,抗原-抗体无法充分结合,酶促反应不充分;洗板过度,反复多次洗板或洗板液流速过快,导致已结合的抗原-抗体复合物被洗脱;加样错误,比如漏加抗体、酶标二抗或底物,或加样时液体未滴入孔底而挂在孔壁上;显色时间过短,底物未完全显色就终止了反应。
4、仪器与环境因素
酶标仪灵敏度下降,无法检测到微弱的显色信号;终止液添加顺序错误或量不足,未彻底终止酶促反应,或反而影响了显色体系的稳定性;检测环境温度过低,抑制酶的催化活性,减慢显色速度。
最新动态
-
12.16
mRNA合成中的5’帽结构和3’poly(A)尾是如何添加的?对mRNA的稳定性有何作用?
-
12.16
双荧光素酶检测适用于哪些实验场景?启动子活性分析和蛋白互作验证的实验设计有何不同?
-
12.16
银染试剂盒通常包含哪些核心试剂组分?各组分的作用是什么?
-
12.16
定制ELISA试剂盒时,封闭液和洗涤液的配方选择对检测结果的稳定性有何影响?
-
12.16
蛋白纯化过程中,亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤层析的组合使用原则是什么?
-
12.16
ELISA试剂盒检测结果,吸光度值过高或过低可能是什么原因导致的?
-
12.15
RIP试剂盒检测RNA与蛋白相互作用,抗体的选择标准是什么?
-
12.15
单克隆抗体定制与多克隆抗体定制相比,在特异性和稳定性上有何优势?
-
12.15
抗体定制后的效价检测需采用哪些方法,如何判断抗体是否满足实验需求(如WB、IHC)?
-
12.15
DNA测序数据的拼接和分析中,如何处理重复序列和测序错误,提高组装准确性?


